《生物化学习题及实验技术(第三版)》一书为修订版教材。上篇是生物化学习题，对应《现代生物化学》教材，增设“碳水化合物和糖生物学”一章。习题包括名字解释、填空、是非、选择、简答等多种形式，内容丰富，难易适中，并附有答案，旨在帮助学生检验学习成效，提高综合分析问题、解决问题的能力。下篇是实验技术，内容涵盖离心、层析、电泳和光谱分析等生物化学基本技术，使学生在掌握糖、脂、蛋白(酶)、核酸、维生素等生命分子分离纯化及检测技术的同时，学习生物化学基本实验技术的综合运用。
李登文，南开大学教授。于1993年进入南开大学微生物系学习。 1997年本科毕业，同年免试继续攻读硕士研究生，研究的主要内容是“酵母金属硫蛋白的研究”，于2000年获得硕士学位。2002年进入南开大学生物化学与分子生物学系，开始博士研究生阶段的学习，研究方向是“组蛋白 H3 磷酸化与细胞有丝分裂的关系研究”，2005年获得博士学位，并留校工作。参与“生物化学”、“普通生物学”等课程的教学工作；科研工作主要集中在细胞形态结构与功能方面的研究，以第 一作者在国际和国内核心刊物发表多篇论文。
上篇 生物化学习题
第一章 绪论 1
第二章 蛋白质化学 6
第三章 酶化学 31
第四章 核苷酸和核酸 56
第五章 维生素与辅酶 81
第六章 生物膜 93
第七章 激素与细胞信号转导 101
第八章 新陈代谢引论 114
第九章 糖代谢 115
第十章 生物氧化 132
第十一章 光合作用 143
第十二章 脂代谢 154
第十三章 氨基酸的代谢 165
第十四章 核苷酸代谢 176
第十五章 DNA的复制、修复和重组 190
第十六章 RNA代谢 209
第十七章 蛋白质的生物合成与修饰 227
第十八章 基因表达的调节 247
第十九章 重组DNA技术与基因组学 267
下篇 生物化学实验技术
第一章 生物分子的制备及分析 279
实验1 蒽酮比色法测定组织中的蔗糖含量 279
实验2 血糖的定量测定 280
实验3 大豆多糖的提取及测定 281
实验4 血清脂类的快速测定 283
实验5 胆固醇的提取及鉴定 285
实验6 维生素C的提取及含量测定 287
实验7 维生素A的提取及含量测定 290
实验8 蛋白质的沉淀作用 291
实验9 氨基酸和蛋白质的颜色反应 293
实验10 蛋白质的两性性质和酪蛋白等电点的测定 295
实验11 胰蛋白酶和胰蛋白酶抑制剂的制备及活力测定 297
实验12 多酚氧化酶的制备和性质研究 298
实验13 碱性蛋白酶活力测定 301
实验14 胰蛋白酶米氏常数（Km）的测定——甲醛滴定法 304
实验15 BCA法测定蛋白质的浓度 305
实验16 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度 306
实验17 鼠多克隆抗体制备 308
实验18 免疫印迹（Western blotting） 309
实验19 酶联免疫吸附测定 312
实验20 DNA的制备、鉴定及含量测定 315
实验21 酵母RNA的制备、鉴定及含量测定 318
实验22 反转录PCR 320
实验23 碱性SDS法快速提取大肠杆菌质粒DNA 322
实验24 紫外分光光度法测定DNA浓度及纯度 324
第二章 色谱分析法 326
实验25 蛋白质的水解和纸色谱法分离氨基酸 326
实验26 离子交换色谱法分离氨基酸 329
实验27 聚酰胺薄膜色谱法测定肽的N末端氨基酸 331
实验28 凝胶过滤色谱法测定蛋白质的分子量 335
实验29 鸡卵黏蛋白的制备及其对胰蛋白酶的抑制作用 341
实验30 糖原磷酸化酶b的分离纯化及检测 346
实验31 亲和色谱法纯化胰蛋白酶 349
实验32 亲和色谱法分离纯化绿色荧光蛋白 354
第三章 区带电泳 357
实验33 醋酸纤维素膜电泳法分离血清蛋白质 357
实验34 乳酸脱氢酶同工酶的聚丙烯酰胺凝胶电泳 360
实验35 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳法测定蛋白质的分子量 366
实验36 聚丙烯酰胺凝胶等电聚焦电泳测定蛋白质的等电点 369
实验37 琼脂糖凝胶电泳法分离鉴定质粒DNA的限制性内切酶酶切片段 372
第四章 物质代谢 375
实验38 肾上腺素的提取和鉴定 375
实验39 胰岛素对血糖水平的影响 376
实验40 发酵过程中的中间产物的鉴定 378
实验41 转氨基作用 379
实验42 饮食和激素对兔肝糖原含量的影响 381
实验43 小鼠肺组织石蜡包埋切片的制备及SPC基因表达的原位杂交检测 383
参考文献 388
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